簡要描述:Mich TLX DNA-seg kit (illumina Compatible) 是為 illumina 平臺設(shè)計的 DNA 文庫準備試劑盒,適用于起始量 1 ng-200 ng 的 DNA 樣本,試劑盒經(jīng)過精心設(shè)計和優(yōu)化,能夠快速構(gòu)建文庫(2.5-3.5小時),有高效的文庫轉(zhuǎn)化率與擴增效率,已經(jīng)經(jīng)過多樣本驗證可獲得優(yōu)異的文庫與測序數(shù)據(jù),可用于石蠟包埋組織 DNA 樣本建庫。
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品牌 | 其他品牌 | 規(guī)格 | 96 rxns |
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供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 應(yīng)用領(lǐng)域 | 生物產(chǎn)業(yè),綜合 |
Mich TLX DNA-seg kit (illumina Compatible) 是為 illumina 平臺設(shè)計的 DNA 文庫準備試劑盒,適用于起始量 1 ng-200 ng 的 DNA 樣本,試劑盒經(jīng)過精心設(shè)計和優(yōu)化,能夠快速構(gòu)建文庫(2.5-3.5小時),有高效的文庫轉(zhuǎn)化率與擴增效率,已經(jīng)經(jīng)過多樣本驗證可獲得優(yōu)異的文庫與測序數(shù)據(jù),可用于石蠟包埋組織 DNA 樣本建庫。試劑盒包含了 DNA 片段化和末端修復(fù)加 A尾的預(yù)混液、連接預(yù)混液、高保真擴增預(yù)混液、短接頭和含有 INDEX 的 PCR 引物(可以根據(jù)客戶要求進行選配)。
(注意: 本試劑盒不可直接用不帶 INDEX 的引物進行 PCR 反應(yīng))。
產(chǎn)品貨號 | 名稱 | 規(guī)格 |
NGS 0602-8 | MICH TLX DNA-seq kit (illumina Compatible) | 8 rxns |
NGS 0602-24 | MICH TLX DNA-seq kit (illumina Compatible) | 24 rxns |
NGS 0602-96 | MICH TLX DNA-seq kit (illumina Compatible) | 96 rxns |
名稱 | 體積(NGS 0602-8) | 體積(NGS 0602-24) | 體積(NGS 0602-96) |
TLX Buffer Mix | 38 μL | 112 μL | 448 μL |
TLX Enzyme Mix | 30 μL | 89 μL | 356 μL |
TLX ligase Enzyme | 20 μL | 56 μL | 224 μL |
TLX ligase Buffer | 76 μL | 224 μL | 896 μL |
TLX Adapter for ILM | 20 μL | 56 μL | 224 μL |
PCR Master Mix | 96 μL | 280 μL | 1120 μL |
使用流程
請穿實驗服并戴一次性手套進行實驗。
使用前請將試劑盒各組分置于室溫解凍。解凍后充分混勻,短暫離心后置于冰上待用。
混勻時請輕輕吹打或輕輕振蕩,劇烈振蕩可能會造成文庫產(chǎn)出下降。
為避免樣品交叉污染,推薦使用帶濾芯的一次性槍頭。
推薦在帶熱蓋的 PCR 儀中進行各步驟反應(yīng),使用前應(yīng)預(yù)熱 PCR 儀至反應(yīng)溫度附近請在潔凈的實驗環(huán)境下實驗,避免污染。
TLX Adapter for ILM 采用短接頭模式。
接頭濃度: 15 uM;直接用于相應(yīng)建庫試劑盒連接體系里即可。
-20°C保存,使用前提前融化,盡量低溫融化,避免在超過 30°的環(huán)境中融化。
建庫推薦使用量: 常規(guī) DNA投入量 100-200 ng,2uL/rxns; 其他 DNA 投入量需要適當(dāng)調(diào)整接頭使用量。
DNA 片段選擇步驟可在接頭連接后或文庫擴增后進行。
當(dāng)Input DNA質(zhì)量> 50 ng,建議在接頭連接后分選;如Input DNA 質(zhì)量<50 ng,可在文庫擴增后進行分選。
TLX Ligase Buffer 包含高濃度的 PEG,對雙輪磁珠分選產(chǎn)生顯著影響。因此,當(dāng)在接頭連接后進行片段選擇,須先進行純化步驟,再進行雙輪分選步驟,如在文庫擴增后進行片段選擇,可直接進行雙輪磁珠分選步驟。
磁珠使用前應(yīng)先平衡至室溫,并混勻再使用,否則會導(dǎo)致得率下降。
80%乙醇應(yīng)現(xiàn)用現(xiàn)配,否則將影響回收效率。
6進行片段選擇時,初始樣品體積應(yīng)盡量> 100 uL,初始樣本體積越大,片段選擇效果越好。
通常情況下,構(gòu)建好的文庫可通過長度分布檢測和濃度檢測來進行質(zhì)量評價。
文庫濃度檢測可使用:基于雙鏈 DNA熒光染料的方法,如Qubit或 gPCR 絕對定量的方法。
文庫長度分布檢測,可通過 Agilent Bioanalvzer 2100 等基于毛細管電泳或微控流原理的設(shè)備進行檢測。
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